在使用試劑盒做實驗的時候，有些細節(jié)若是做不好會出現(xiàn)實驗異常，或者效果不佳，那么你有想過是什么原因嗎？
·白板異常：顯色步驟結(jié)束后，酶標板所有孔均無顏色。陽性對照不顯色。
  這可能是因為：
 1. 試劑已過效期，或不同試劑盒組分混用（解決方式：檢查試劑的組分及批號，確認未過期以及所有組分均屬對應(yīng)的試劑盒。不同試劑盒或不同批號的試劑不能混用）。
 2. 錯加、漏加試劑底物、顯色劑 A或B（解決方式：嚴格按說明書的步驟操作，加完試劑后可觀察一下液面高度是否一致，以減少漏加現(xiàn)象）。
 3. 洗板及加樣過程中，酶標受污染失活失去催化顯色劑顯色的能力（解決方式：確認盛酶標的容器不含酶抑制劑如疊氮鈉等，確認配制洗液的容器已洗干凈）。
 4. 終止液誤作洗滌液稀釋或當?shù)孜锞彌_液配制（解決方式：每次配制時都應(yīng)看清標簽標明物質(zhì)）。
 5. 蒸餾水有問題（解決方式：確認配制洗液的純化水達到要求且未污染，與好蒸餾水比較）。
    
·顯色弱、靈敏度低：實驗結(jié)束后，包括陽性對照、質(zhì)控在內(nèi)的所有板孔顏色均較淡。 
  這可能是因為：試劑盒超過期， 超過有效期的產(chǎn)品可能會產(chǎn)生很弱的信號；試劑盒沒有按規(guī)定進行保存，受高溫影響（實驗前檢查試劑的組分及批號，確認試劑未過期。不要將試劑盒長時間置于常溫下，按使用規(guī)定儲藏）。

 1. 試劑、樣品用前未平衡至室溫。如何解決？從低溫冰箱中取出的試劑及樣品應(yīng)置室溫平衡 20分鐘左右。
 2. 加入試劑的體積和時間有誤，移液器計量不準，吸嘴內(nèi)水分太多或不清潔。如何解決？確定所使用的試劑體積正確，加入時間適當。 校正移液器，移液器與吸嘴配合要緊密吻合。移液不宜太快，排放應(yīng)*。
 3. 洗板及加樣過程中，酶標受污染失活而失去催化顯色劑顯色的能力。如何解決？確認盛酶標的容器不含酶抑制劑如疊氮鈉等，確認配制洗液的容器已洗干凈，確認配制洗液的純化水達到要求且未受污染。
 4. 孵育時間及孵育溫度未達到要求 ，反應(yīng)板放入培養(yǎng)箱時注意溫度并及時調(diào)整。如何解決？孵育溫度應(yīng)控制在 37-38℃，孵育時間嚴格按照說明書操作。 保溫期內(nèi)不宜多開門，以免影響保溫。
 5. 洗板次數(shù)過多，或濃縮洗液稀釋倍數(shù)不符合要求；洗滌沖擊力太大。浸泡時間太長。如何解決？嚴格按說明書要求稀釋濃縮洗液及洗板，減小洗滌沖擊力，按說明書要求置留洗滌液時間和洗滌次數(shù)。
 6. 顯色劑加量不足或順序顛倒，或混合后加入。如何解決？顯色劑滴瓶垂直向下，持力均勻，滴速不宜過快，先加顯色劑 A，后加顯色劑B，不可將A、B液混合后加入
 7. 底物作用時間不夠。如何解決？準確定時。
 8. 蒸餾水水質(zhì)有問題。如何解決？測定蒸餾水配制試劑對酶免疫法的影響。
    
·實驗結(jié)束后，陰陽性對照正常，質(zhì)控正常，但臨床標本感覺顯色較弱 
1. 待測標本中可能不含強陽性標本，故結(jié)果可能是正常的（解決方式：如有懷疑，可復檢）。
2. 標本加入疊氮鈉作為防腐劑（解決方式：酶免實驗中的標本禁用疊氮鈉作為防腐劑，可選用 proclin、硫柳汞等其他防腐劑）。

·陰陽性對照正常，但質(zhì)控、參考品或個別弱陽性標本未能檢出。
1. 未達要求的孵育溫度及孵育時間可檢出強陽性標本，但質(zhì)控或弱陽性標本受 溫度變化影響較大而被未檢出（解決方式：質(zhì)控品或標本避免反復凍融。標本在一周內(nèi)使用的，可存于 2-8℃，如需長期保存，應(yīng)置于-20℃以下保存。質(zhì)控品應(yīng)小量分裝，并置于-20℃以下保存）。
2. 質(zhì)控品或標本高溫放置過久，或被反復凍融致待測物滴度下降，而未能檢出（解決方式：重新設(shè)定酶標儀的參數(shù)，特別是檢查濾光片是否匹配）。
3. 儀器設(shè)定不正確，濾光片不匹配（解決方式：重新設(shè)定酶標儀的參數(shù)，特別是檢查濾光片是否匹配）。